序号

实验名称

时数

实验

类型

课程内容

教学要求

1

植物组织中自由水和束缚水含量的测定

6

综合性

1.用打孔器取叶圆片放入2个称量瓶。

2.1号瓶烘干计算组织含水量。

3.2号瓶称重计算样品鲜重。

4.2号瓶加蔗糖溶液置阴凉处4-5h，经常摇动。

5.用折射仪测定原蔗糖溶液与浸出液浓度。

6.计算。

1.用于计算含水量和测定的叶子圆片必须取同一叶片对称位置。

2.测定蔗糖浓度时水温必须控制在20℃.

2

植物组织渗透势的测定（质壁分离法）

3

验证性

1.配浓度梯度蔗糖溶液。溶液

2.撕取洋葱外表皮-→按顺序放入蔗糖溶液（放置5min-10 min）→显微镜观察.

3.寻找有半数以上初始质壁分离的表皮细胞,记录浓度。

利用质壁分离现象验证植物细胞的死活及测定植物组织的渗透势，理解植物组织水势的组成及发生质壁分离现象的条件。

3

植物组织水势的测定（液体交换法）

3

验证性

1.于对照组试管配置蔗糖浓度梯度溶液。

2.取8个青霉素小瓶，分别从各试管中对应取出4ml蔗糖溶液.

3.用打孔器打取小叶片，每个青霉素小瓶放置十片，放置30分钟(中间摇动几次).

4.每个小瓶加亚甲基蓝少许，用毛细管从各青霉素小瓶依次取少许液体伸到相应浓度液体的中部，缓慢放出一滴蓝色溶液，观察小液滴移动方向。

1.为了减小实验结果误差，所用叶片应叠起来打孔，使各瓶中叶片均匀

2.蔗糖梯度溶液一定要摇匀.

3.掌握植物组织水势的测定方法，并了解渗透系统中水势大小是水分移动方向的决定因素。

4

单盐毒害及离子颉颃作用

6

综合性

1.选种，培养实验材料；

2.配制KCL、CaCL2、NaCL及其混合溶液；

3.幼苗培养，；

4.2-3周后观察记录结果。

1.培养实验材料要选饱满种子，根长以1cm为宜；

2.植入的幼苗要牢固，根部与药液接触好；

3.培养期间每天补充水分。

5

叶绿素a和叶绿素b含量的测定

3

综合性

根据叶绿素对可见光的吸收光谱，利用分光光度计在某一特定波长下测定其OD值，而后用公式 [叶绿素含量（mg/g*Fw）=C(mg/L)*提取液总量(ml)*稀释倍数/样品鲜重(g)*1000]计算叶绿素含量。

正确使用分光光度计和离心机。

本试验学习测定叶绿素含量的方法之一—分光光度法，并比较不同植物叶绿素的含量。为科学施肥、育种及植物病理研究提供生理指标。

6

植物呼吸强度的测定（小篮子法）

3

验证性

密闭容器放入萌发的种子（或其它生活组织），呼吸作用消耗容器中的O2,放出CO2,CO2被容器中Ba(OH)2吸收，实验结束后，用草酸溶液滴定剩余碱液，从空白和样品二者消耗草酸之差，可计算出呼吸过程中释放的CO2的量。

1.操作时，不要使自己呼出的CO2进入广口瓶。

2.迅速取下小篮子，立即重新塞紧，充分摇动，加入酚酞，草酸标定，先标定发芽种子。

3.注意最后滴定时，放慢速度

7

种子活力的快速测定

3

综合性

一、TTC法

1.浸种

2.显色：吸胀种子200粒，沿胚中心切开，加TTC，恒温箱0.5-1小时。用杀死的种子作对照。

3.观察结果。计算活种子百分率。

二、红墨水染色法

1.浸种

2.染色：吸胀种子200粒，沿胚中心切开，加红墨水染色。

3.倒去红墨水，用水冲洗多次，检查种子死活。用杀死的种子作对照。

4.观察结果。计算活种子百分率。

两种方法均以细胞对该物质的透性为前提，只能快速地了解种子的发芽潜力，为急需之用。

合计课时

27